Evaluation of Phytochemical Screening, Antioxidant and Antimicrobial Activities from Ethanolic Extracts of the Flacourtia indica (Burm.f.) Merr. Fruits
Article Sidebar
Main Article Content
Abstract
The objectives of this research were to evaluate the preliminary phytochemical screening, antioxidant and antimicrobial activities of ethanolic extracts from the peel, pulp, and the seed of Flacourtia indica (Burm.f.) Merr. Phytochemical screening revealed the presence of phenolics, flavonoids, tannins, saponins, diterpenes, and anthraquinones in the peel extracts; phenolics, flavonoids, and tannins in the pulp extracts; and flavonoids and tannins in the seed extracts. The total phenolics content (TPC) and total flavonoid content (TFC) of the extracts were determined using the Folin-Ciocalteu and aluminium chloride colorimetric methods (expressed in gallic acid (GAE) and quercetin (QE) equivalent respectively). The highest TPC was found in pulp extract (30.44 ± 0.67 mg GAE/ 100 g DW) and TFC was the greatest amount in seed extract (1093.33 ± 1.53 mg QE/ 100 g DW). The peel extract exhibited the strongest antioxidant properties as shown by DPPH, ABTS, and FRAP assays (IC50 = 0.13 ± 0.01, 28 ± 0.01 mg/ml and FRAP value = 305.04 ± 3.68 mg FeSO4 /100 g DW, respectively). In addition, all extracts (200 mg/ml) showed antimicrobial activity. The peel extract inhibited gram positive bacteria (Bacillus subtilis, Micrococcus luteus, Staphylococcus aureus, and Streptococcus faecalis), gram negative bacteria (Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella typhimurium, and Serratia marcescens) and yeast (Candida albicans). The pulp extract inhibited the same gram positive bacteria as the peel extract and four gram negative bacteria (E. coli, Protues vulgaris, P. aeruginosa, and S. typhimurium). The seed extract inhibited three gram positive bacteria (B. subtilis, M. luteus, and S. aureus) and one gram negative bacteria (E. coli). These results suggested that the ethanolic extracts of F. indica fruits could be the potential source of natural antioxidant and antimicrobial agents for nutraceutical and medical applications.
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
References
เต็ม สมิตินันท์. ชื่อพรรณไม้แห่งประเทศไทย [อินเตอร์เน็ต]. 2557 [สืบค้นเมื่อวันที่ 8 เม.ย. 2563].จาก: http://www.dnp.go.th/botany
/mplant/index.aspx.
คณะเภสัชศาสตร์ มหาวิทยาลัยอุบลราชธานี. ตะขบป่า [อินเตอร์เน็ต]. 2563 [สืบค้นเมื่อวันที่ 8 เม.ย. 2563] จาก: http://www.phargarden.com/main.php?action=viewpage&pid=45.
Ndhlala AR, Kasiyamhuru A, Mupure C, Chitindingu K, Benhura MA, Muchuweti M. Phenolic composition of Flacourtia indica, Opuntia megacantha and Sclerocary abirrea. Food Chem. 2006;103(2007):82-7.
Alakolanga AGAW, Siriwardane AMDA. Siriwardane AMDA, Kumar S, Lalith J, Rakesh, et al. LC-MSn identification and characterization of the phenolic compounds from the fruits of Flacourtia indica (Burm. F.) Merr. and Flacourtia inermis Roxb. Food res Int. 2014;62(2004):388-96.
Eramma N, Gayathri D. Antibacterial potential and phytochemical analysis of Flacourtia indica (Burm.f.) Merr. root extract against human pathogens. Indo Am J Pharm Res. 2013;3(5):3832-46.
Swati M, Nath SG, Yatendra K, Kanchan K, Mohan SR, Prakash O. Phytochemical analysis and free-radical scavenging activity of Flacourtia indica (Burm.f.) Merr. J Pharm Res. 2009;8(2):81-4.
Nazneen M, Mazid A, Kundu JK, Bachar SC, Begum F, Dat BK. Protective effects of Flacourtia indica aerial parts extracts against paracetamol‐induced hepatotoxiciy in rats. J Taibah Univ Sci. 2009;2:1-6.
Varkey J, Thomas J. Protective effect of Flacourtia indica (Brum. f) Merr. in methotrexate induced hepatotoxicity. Pharmanest. 2011;2(2-3):115-23.
Biswas A, Battu G. Flacourtia indica (burm.f.) prevents CCl4 induced rat liver damage by augmenting antioxidant enzyme activity. Eur J Pharm Med Res. 2016;3(4):263-70.
Kaou AM, Mahiou-Leddet V, Canlet C, Debrauwer L, Hutter S, Laget M, et al. Antimalarial compounds from the aerial parts of Flacourtia indica (Flacourtiaceae). J Ethnopharmacol. 2010;130(2):272-4.
Sashidhara KV, Singh SP, Singh SV, Srivastava RK, Srivastava K, Saxena JK, et al. Isolation and identification of β-hematin inhibitors from Flacourtia indica as promising antiplasmodial agents. Eur J Med Chem. 2013;60:497-502.
โชติกา คุณประทุม, ปกิต กำบุญมา, ปุญชรัส คริษฐพัฌฑาวัณ, ชนกพร เผ่าศิริ. การตรวจสอบสารพฤกษเคมีเบื้องต้น ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและฤทธิ์ต้านเชื้อแบคทีเรียของสารสกัดเมทานอลจากยอดและกิ่งอ่อนสะเดาหวาน. ใน: รายงานการประชุมวิชาการเสนอผลงานวิจัยบัณฑิตศึกษา ระดับชาติและนานาชาติ 2559. การประชุมวิชาการเสนอผลงานวิจัยบัณฑิตศึกษา ระดับชาติและนานาชาติ 2559; 15 ม.ค.2559; มหาวิทยาลัยขอนแก่น. ขอนแก่น: มหาวิทยาลัยขอนแก่น; 2559. น. 308-16.
Vichit W, Saewan N. Antioxidant activities and cytotoxicity of Thai pigmented rice. Int J Pharm Pharm Sci. 2015;7(7):329-34.
Phattatakorn K, Pajanyor P, Wongtecha S, Prommakool A, Savebowon W. Effect of germination on total phenolic content and antioxidant properties of “Hang” rice. Int Food Res J. 2016;23(1):406-9.
Vararat S, Managit C, Iamthanakul L, Soparat W, Kamkean N. Examination of antioxidant activity and development of rice bran oil and gamma-oryzanol microemulsion. J Health Res. 2010;24(2):67-72.
Pang Y, Ahmed S, Xu Y, Beta T, Zhu Z, Shao Y, et al. Bound phenolic compounds and antioxidant properties of whole grain and bran of white, red, and black rice. Food Chem. 2018;240:212-21.
Kaur M, Asthir B, Mahajan G. Variation in antioxidant, bioactive compounds and antioxidant capicity in germinated and ungerminated grains of ten rice cultivars. Rice Sci. 2017;24(6):349-59.
Bhargava S, Dhabhai K, Batra A, Sharma A, Malhotra B. Zingiber officinale: Chemical and phytochemical screening and evaluation of its antimicrobial activities. J Chem Pharm Res. 2012;4:360-64.
เจนจิรา จิรัมย์, ประสงค์ สีหานาม. อนุมูลอิสระและสารต้านอนุมูลอิสระ: แหล่งที่มาและกลไกการเกิดปฏิกิริยา [Oxidants and antioxidants: sources and mechanism]. วารสารวิชาการมหาวิทยาลัยราชภัฏกาฬสินธุ์. 2554;1(1):59-70.
สุชาดา มานอก, ปวีณา ลิ้มเจริญ. การวิเคราะห์ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระโดยวิธี DPPH, ABTS และ FRAP และปริมาณสารประกอบฟีนอลิกทั้งหมดของสารสกัดสมุนไพรในตำรับยาหอมเทพจิตร [Investigation antioxidant activity by DPPH, ABTS assay and total phenolic compounds of herbal extracts in Ya-Hom Thepphachit]. วารสารก้าวทันโลกวิทยาศาสตร์. 2558;15(1):106-17.
นพวัฒน์ เพ็งคำศรี, จัตุพล กันทะมูล, ภัทราภรณ์ โตวัฒนกิจ, วชิรวิทย์ วงศ์ษารัฐ, วนิดา ใจหมั่น, นิภาพร เมืองจันทร์, และคณะ. ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดเหง้าข่าลิง [Antioxidant effect of Alpinia Conchigera rhizome extracts]. วารสารไทยเภสัชศาสตร์และวิทยาการสุขภาพ. 2554;6(3):195-201.
Saxena M, Saxena J, Pradhan A. Flavonoid and phenolic acids as antioxidants in plants and human health. Int J Pharm Sci Rev Res. 2012;16(2):130-4.
ทิฐิมา ภาคภูมิ, กัลยาภรณ์ จันตรี, อรพิณ โกมุติบาล. ฤทธิ์ต้านจุลินทรีย์และสารต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดใบพลูเพื่อพัฒนาเป็นเครื่องสำอาง [Antimicrobial and antioxidant capacity of leaf extract of Piper betle Linn. for development to cosmetics]. วารสารวิจัย มสด สาขามนุษยศาสตร์และสังคมศาสตร์. 2559;9(1):1-20.
Hayriye CK, Melissa CN. Antimicrobial efficacy of plant phenolic compounds against Salmonella and Escherichia coli. Food Biosci. 2015;2:8–16.
Windell LR, Demetrio L, Valle J, Jeannie A, Juliana JMP, Esperanza CC. Antibacterial activities of ethanol extracts of Philippine medicinal plants against multidrug-resistant bacteria. Asian Pac J Trop Biomed. 2015;5(7):532–40.
สุภกร บุญยืน. ฤทธิ์ต้านอนุมูลิสระ ฤทธิ์ต้านแบคทีเรีย ปริมาณฟีนอลิกทั้งหมด และปริมาณฟลาโวนอยด์ทั้งหมด ของสารสกัดพืชหางนกยูง [Decomposition antioxidant, antimicrobial activities, total phenolic content and total flavonoid content of Delonix regia (Boj. Ex Hook.) Raf. extracts]. Thai Journal of Science and Technology. 2559;5(1):20-8.
Bouyahya A, Moussaoui NE, Abrini J, Bakri Y, Dakka N. Determination of phenolic contents, antioxidant and antibacterial activities of strawberry tree (Arbutus unedo L.) leaf extracts. Br Biotechnol J. 2016;14(3):1-10.