ผลของสารควบคุมการเจริญเติบโตและสารประกอบอินทรีย์ต่อการชักนำให้เกิดยอดและการลดอาการปลายยอดไหม้ของสตรอเบอร์รี่ในหลอดทดลอง
คำสำคัญ:
การชักนำให้เกิดยอด , ปลายยอดไหม้ , สตรอเบอร์รี่ , น้ำมะพร้าวบทคัดย่อ
สตรอว์เบอร์รี่สามารถขยายพันธุ์ด้วยการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพืช ซึ่งถือเป็นวิธีการที่ใช้ผลิตต้นกล้าสตรอว์เบอร์รี่ปลอดโรคและได้จำนวนต้นในปริมาณมาก แต่อาจพบปัญหาปลายยอดไหม้ในขั้นตอนการเพิ่มจำนวนได้ ซึ่งงานวิจัยครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของสารควบคุมการเจริญเติบโต ความเข้มข้นของธาตุอาหารหลัก ธาตุอาหารรอง และชนิดของสารประกอบอินทรีย์ต่อการชักนำให้เกิดยอดและลดอาการปลายยอดไหม้ของสตรอเบอร์รี่พันธุ์พระราชทาน 80 โดยเพาะเลี้ยงชิ้นส่วนยอดบนอาหารสูตร MS (Murashige & Skoog, 1962) ที่เติม BA (Benzyl adenine) ความเข้มข้น 0 1 2 3 และ 4 มิลลิกรัมต่อลิตร เป็นเวลา 4 สัปดาห์ พบว่า อาหารสูตร MS ที่เติม BA 3 มก.ต่อลิตร ชักนำให้เกิดยอดได้ดีและมีเปอร์เซ็นต์การเกิดยอดไหม้ 40% เมื่อเพิ่มความเข้มข้นของสารละลายที่ใช้เตรียมอาหารในสต๊อคที่ 1 และ 2 เป็น 2 เท่า ร่วมกับการเติม BA 3 มก.ต่อลิตร ชักนำให้มีการสร้างยอดมากขึ้น แต่การเกิดยอดไหม้เท่าเดิม (40%) ส่วนการเพาะเลี้ยงชิ้นส่วนยอดบนอาหารสูตร MS ที่เติม BA 3 มก.ต่อลิตร ร่วมกับน้ำมะพร้าว 10% ชักนำให้เกิดยอดได้ดี และเกิดยอดไหม้ลดลง (20%) แสดงให้เห็นว่าการเติมน้ำมะพร้าวช่วยลดอาการปลายยอดไหม้ของสตรอเบอร์รี่ที่เพาะเลี้ยงในสภาพหลอดทดลองได้ ข้อมูลนี้สามารถนำไปใช้แก้ปัญหาการเกิดปลายยอดไหม้ที่อาจพบได้จากการเพาะเลี้ยงสตรอเบอร์รี่ได้
เอกสารอ้างอิง
คงกฤช อินทแสน. (2558). การปลูกสตรอเบอรี่ ศูนย์ส่งเสริมและพัฒนาอาชีพการเกษตร จังหวัดกาญจนบุรี (เกษตรที่สูง). สืบค้นข้อมูล 17 มีนาคม 2568, จาก http://www.haec01.doae.go.th/aticles/stawberry
ถกลวรรณ ศิริสวัสดิ์. (2564). ลักษณะผิดปกติจากการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพืช. สืบค้นข้อมูล 17 มีนาคม 2568, จาก https://stri.cmu.ac.th/article_detail.php?id=61
นพมณี โทปุญญานนท์, น้ำฝน อุตตมะ, และธนาภรณ์ แก้วดา. (2562). ปัจจัยที่มีผลต่อระบบขยายพันธุ์สตรอเบอรีพันธุ์พระราชทาน 80 และพันธุ์ 329 ในสภาพปลอดเชื้อ. Thai Journal of Science and Technology, 8(2), 176-189.
ศุภาวีร์ แสงจันทร์จิรเดช, ชญานนท์ แก้วพรหม, ขจรพงศ์ ดาศรี, นันทพร สุทธิประภา, และขวัญเดือน รัตนา. (2567). การขยายพันธุ์ฟิโลเดนดรอนไวท์ปริ้นเซสและฟิโลเดนดรอนเวอร์รูโคซัมในหลอดทดลองด้วยระบบไบโอรีแอคเตอร์แบบจมชั่วคราว. PSRU Journal of Science and Technology, 9(3), 94-108.
สถาบันวิจัยและพัฒนาแห่งมหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์. (2560). สตรอว์เบอร์รี่โครงการหลวงกับมหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ (รายงานวิจัย). สืบค้นข้อมูล 17 มีนาคม 2568, จาก https://www.3.rdi.ka.ac.th/?p=40028
Ghatas, Y.A. (2016). Employment of Tissue Culture Techniques in Improvement Propagation of Paulownia tomentosa Plant. Journal of Plant Production, Mansoura University, 7(6), 619–625.
Ghazzawy, H.S., & El-Sharabasy, S.F. (2019). Effect of Natural Additives as Coconut Milk on the Shooting and Rooting Media of in vitro Barhi Date Palm (Phoenix dactylifera L.). By-Products of Palm Trees and Their Applications, 11, 186–192.
Jan, T., Hazrat, A., Naqvi, B., Sher, K., Muhammad, N., Khan, N., Jan, G., Farzana, G.J., & Raiha, Q. (2020).
Alleviation of shoot tip necrosis in vitro propagation of Salvia santolinifolia, Boiss. Romanian Biotechnological Letters, 25(2), 1356–1361.
Kishore, K., Patnaik, S., & Shukla, A.K. (2015). Optimization of method to alleviate in vitro shoot tip necrosis in Trichosanthes dioica Roxb. Indian Journal Biotechnol, 14, 107–111.
Kruichucheep, A., & Suppadit, T. (2012). Utilizing Bio Extracted Water from Coconut Water in Each Level as Plant Supplement for Soybean Plantation. Journal of the Association of Researchers, 17(1), 112-124.
Mangena, P. (2020). Effect of Hormonal Seed Priming on Germination, Growth, Yield and Biomass Allocation in Soybean Grown under Induced Drought Stress. Indian Journal of Agricultural Research, 54(5), 592-598.
Mercado, S.A.S., & Contreras, N.A.V. (2017). Asymbiotic seed germination and in vitro propagation of Cattleya trianae Linden & Reichb.f. (Orchidaceae), Acta Agronomica, 6(4), 544–548.
Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15(3), 473-497.
Nezami-Alanagh, E., Garoosi, G-A., Landín, M., & Gallego, P.P. (2019). Computer-based tools provide new insight into the key factors that cause physiological disorders of Pistachio rootstocks cultured in vitro. Sci Rep, 9(9740), 1-15.
Ray, S., & Jha, S. (2001). Production of withaferin A in shoot cultures of Withania somnifera. Planta Medica, 67, 432–436.
Silva, J.A, Nezami-Alanagh, E., Barreal, M.E, Kher, M.M, Wicaksono, A., Gulyás, A., Hidvégi, N., Magyar-Tábori, K., Mendler-Drienyovszki, N., Márton, L., Landín, M., Gallego, P.P, Driver, J.A, & Dobránszki, J. (2020). Shoot tip necrosis of in vitro plant cultures: a reappraisal of possible causes and solutions. Planta, 252(3), 3-35.
Surakshitha, N.C., Soorianathasundaram, K., Ganga, M., & Raveendran, M. (2019). Alleviating shoot tip necrosis during in vitro propagation of grape cv. Red Globe. Scientia Horticulturae, 248, 118-125,
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
ลิขสิทธิ์ (c) 2026 PSRU Journal of Science and Technology

อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
กองบรรณาธิการขอสงวนสิทธิ์ในการปรับปรุงแก้ไขตัวอักษรและคำสะกดต่างๆ ที่ไม่ถูกต้อง และต้นฉบับที่ได้รับการตีพิมพ์ในวารสาร PSRU Journal of Science and Technology ถือเป็นกรรมสิทธิ์ของคณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยราชภัฏพิบูลสงคราม และ
ผลการพิจารณาคัดเลือกบทความตีพิมพ์ในวารสารให้ถือมติของกองบรรณาธิการเป็นที่สิ้นสุด
