สภาวะการสกัดต่อปริมาณสารสกัดหยาบซัลเฟตพอลิแซ็กคาไรด์ สารประกอบฟีนอลิก และฤทธิ์ต้านออกซิเดชันของสาหร่ายพวงองุ่น
DOI:
https://doi.org/10.14456/lsej.2024.36คำสำคัญ:
สาหร่ายพวงองุ่น, สารสกัดหยาบซัลเฟตพอลิแซ็กคาไรด์ , สารต้านออกซิเดชันมาตรฐานบทคัดย่อ
สาหร่ายพวงองุ่นเป็นสาหร่ายที่มีประโยชน์ต่อสุขภาพของผู้บริโภคทำให้มีราคาค่อนข้างสูง สาหร่ายพวงองุ่นจึงได้รับการส่งเสริมให้มีการเพาะเลี้ยงเชิงพาณิชย์ การศึกษานี้จึงสนใจนำสาหร่าย พวงองุ่นมาสกัดเป็นสารสกัดหยาบซัลเฟตพอลิแซ็กคาไรด์ซึ่งมีสมบัติเป็นสารออกฤทธิ์ชีวภาพ โดยศึกษาสภาวะการสกัดสารสกัดหยาบซัลเฟตพอลิแซ็กคาไรด์จากอัตราส่วนสาหร่ายต่อน้ำ (1:5, 1:10 และ 1:15) และเวลาในการสกัด (30, 60 และ 90 นาที) ที่ต่างกัน ผลการทดลองพบว่าการใช้อัตราส่วน 1:10 นาน 60 นาที เป็นสภาวะที่เหมาะสมในการสกัดสารสกัดหยาบซัลเฟตพอลิแซ็กคาไรด์ โดยมีร้อยละ การผลิต ปริมาณสารประกอบฟีนอลิก และฤทธิ์ต้านออกซิเดชัน (วิธี ABTS และ DPPH) มากที่สุดเท่ากับร้อยละ 0.85±0.10, 31.99±0.46 มิลลิกรัมสมมูลกรดแกลลิก/กรัมสารสกัด ร้อยละการยับยั้ง 44.19±1.51 และ 30.55±1.30 ตามลำดับ (p≤0.05) การวิเคราะห์องค์ประกอบทางเคมีของสารสกัดหยาบ
ซัลเฟตพอลิแซ็กคาไรด์พบว่ามีปริมาณความชื้น โปรตีน ไขมัน และเถ้า เท่ากับร้อยละ 2.37±0.18, 1.49±0.18, 0.17±0.03 และ 12.23±0.06 ตามลำดับ และมีปริมาณสารประกอบฟีนอลิกเท่ากับ 31.99±0.46 มิลลิกรัมสมมูลกรดแกลลิก/กรัมสารสกัด มีค่าร้อยละการยับยั้งจากวิธี ABTS และ DPPH เท่ากับร้อยละ 44.19±1.51 และ 30.55±1.30 ตามลำดับ (p≤0.05) การเปรียบเทียบฤทธิ์ต้านออกซิเดชันระหว่างสารสกัดหยาบซัลเฟตพอลิแซ็กคาไรด์กับสารต้านออกซิเดชันมาตรฐาน ได้แก่ กรดแกลลิก บิวทิเลตไฮดรอกซี-โทลูอีน สามารถเรียงลำดับประสิทธิภาพการต้านออกซิเดชันที่วิเคราะห์ได้จากวิธี ABTS และ DPPH จากมากไปน้อยได้ดังนี้ บิวทิเลตไฮดรอกซีโทลูอีน กรดแกลลิก และสารสกัดหยาบซัลเฟตพอลิแซ็กคาไรด์ ตามลำดับ
References
AOAC. Official method of analysis (17th ed.). Washington, DC: Association of the Official Analytical Chemists. (2000).
Castro-Puyana M, Marina ML, Plaza M. Water as green extraction solvent: Principles and reasons for its use. Current Opinion in Green and Sustainable Chemistry 2017;5:31-36.
Chattopadhyay K, Mandal P, Lerouge P, Driouich A, Ghosal P, Ray B. Sulphated polysaccharides from Indian samples of Enteromorpha compressa (Ulvales, Chlorophyta): Isolation and structural features. Food Chemistry 2007;104:928-935.
Chen L, Wang Y, Yang H, Li H, Xu W, Chen G, Zhu H. Physicochemical characterization, antioxidant and immunostimulatory activities of sulfated polysaccharides extracted from Ascophyllum nodosum. Molecules 2018;23(8):1912.
Ciancia M, Fernández PV, Leliaert F. Diversity of sulfated polysaccharides from cell walls of coenocytic green algae and their structural relationships in view of green algal evolution. Frontiers in Plant Science 2020;11,554585.
Figueroa FA, Abdala-Díaz RT, Pérez C, Casas-Arrojo V, Nesic A, Tapia C, et al. Sulfated polysaccharide extracted from the green algae Codium bernabei: physicochemical characterization and antioxidant, anticoagulant and antitumor activity. Marine Drugs 2022;20:458.
Honwichit O, Ruengsaengrob P, Buathongjan C, Charoensiddhi S. Influence of extraction methods on the chemical composition and antioxidant activity of polysaccharide extracts from discarded sea grape (Caulerpa lentillifera). Journal of Fisheries and Environment 2022;46(1):169-179.
Jiksing C, Ongkudon MM, Thien VY, Rodrigues KF, Yong WTL. Recent advances in seaweed seedling production: a review of eucheumatoids and other valuable seaweeds. Algae 2022;37:105-121.
Lu J, Brown JS, Boughner EC, Liotta CL, Eckert CA. Solvatochromic characterization of near-critical water as a benign reaction medium. Industrial & Engineering Chemistry Research 2002;41:2835-2841.
Manok S, Limcharoen P. Investigating antioxidant activity by DPPH, ABTS and FRAP assay and total phenolic compounds of herbal extracts in Ya-Hom Thepphachit. Advanced Science 2015;15(1): 106-117.
Martysiak-Zurowska D, Wenta W. A comparison of ABTS and DPPH methods for accessing the total antioxidant capacity of human milk. Acta Scientiarum Polonorum Technologia Alimentaria 2012;11(1):83-89.
Mišurcová L, Orsavová J, Ambrožová JV. Algal polysaccharides and health. Advances in Food and Nutrition Research 2012;66:75-145.
Mollah MZI, Khan MA, Khan RA. Effect of gamma irradiated sodium alginate on red amaranth (Amaranthus cruentus L.) as growth promoter. Radiation Physics and Chemistry 2009;78(1):61-64.
Mousavian Z, Safavi M, Azizmohseni F, Hadizadeh M, Mirdamadi S. Characterization, antioxidant and anticoagulant properties of exopolysaccharide from marine microalgae.AMB Express 2022;12:27.
Nagahawatta DP, Liyanage NM, Jayawardena TU, Yang F, Jayawardena HHACK, Kurera MJMS, et al. Functions and values of sulfated polysaccharides from seaweed. Algae 2023;38(4):217-240.
Nwude DO, Osamudiamen PM, Enessy SM. Phytochemical investigation of Mezoneuron benthamianum Baill, isolation, in vitro antioxidant, alpha-amylase inhibition, and in silico modelling studies. South African Journal of Botany 2024;165:256-237.
Phetchaburi Coastal Fisheries Research and Development Center. Cultivation and processing of grape seaweed, 2019. Available at: https://www4.fisheries.go.th/local/file_document/20190619091640 _1_file.pdf. Accessed June 13, 2024.
Richter BE, Jones BA, Ezzell JL, Porter NL, Avdalovic N, Pohl C. Accelerated solvent extraction: a technique for sample preparation. Analytical Chemistry 1996;68:1033-1039.
Rodríguez-Jasso RM, Mussatto SI, Pastrana L, Aguilar CN, Teixeira JA. Extraction of sulfated polysaccharides by autohydrolysis of brown seaweed Fucus vesiculosus. Journal of Applied Phycology 2013;25:31-39.
Rormwong T, Sakpetch P, Choojit S, Kanjan P. Extraction of sulfated polysaccharide from red seaweed (Gracilaria fisheri) and growth promotion of probiotic bacteria. Burapha Science Journal 2023;28(2):752-771.
Srimongkol P, Songserm P, Kuptawach K, Puthong S, Sangtanoo P, Thitiprasert S, et al. Sulfated polysaccharides derived from marine microalgae, Synechococcus sp. VDW, inhibit the human colon cancer cell line Caco-2 by promoting cell apoptosis via the JNK and p38 MAPK signaling pathway. Algal Research 2023;69:102919.
Sun Y, Liu Z, Song S, Zhu B, Zhao L, Jiang J, et al. Anti-inflammatory activity and structural identification of a sulfated polysaccharide CLGP4 from Caulerpa lentillifera. International Journal of Biological Macromolecules 2020;146:931-938.
Tesvichian S, Sangtanoo P, Srimongkol P, Saisavoey T, Buakeaw A, Puthong S, et al. Sulfated polysaccharides from Caulerpa lentillifera: Optimizing the process of extraction, structural characteristics, antioxidant capabilities, and anti-glycation properties. Heliyon 2024;10:e24444.
Usman A, Khalid S, Usman A, Hussain Z, Wang Y. Chapter 5 - Algal polysaccharides, novel application, and outlook. In Zia KM, Zuber M, Ali M. (Eds.), Algae based polymers, blends, and composites. Netherlands: Elsevier; 2017:115-153.
Wang W-N, Li T, Li Y, Zhang Y, Wu HL. Exopolysaccharides from the energy microalga strain. Foods 2022;11(1):110.
Yang MY, Kim MS. Phylogeography of the economic seaweeds Chondrus (Gigartinales, Rhodophyta) in the northwest Pacific based on rbcL and COI-5P genes. Algae 2022;37:135-147.
Yu F, Li H, Meng Y, Yang D. Extraction optimization of Angelica sinensis polysaccharides and its antioxidant activity in vivo. Carbohydrate Polymers 2013;94:114-119.
Yuan Y, Liu Y, Liu M, Chen Q, Jiao Y, Liu Y, et al. Optimization extraction and bioactivities of poly-saccharide from wild Russula griseocarnosa. Saudi Pharmaceutical Journal 2017;25:523-530.
Zhang M, Zhao M, Qing Y, Luo Y, Xia G, Li Y. Study on immunostimulatory activity and extraction process optimization of polysaccharides from Caulerpa lentillifera. International Journal of Biological Macromolecules 2020;143:677-684.
Downloads
เผยแพร่แล้ว
How to Cite
ฉบับ
บท
License
Copyright (c) 2024 Life Sciences and Environment Journal
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
Each article is copyrighted © by its author(s) and is published under license from the author(s).
0-5526-7000 Ext. 7230
