การเตรียมเอทโธโซมสารสกัดเปลือกกล้วยหอมทอง เพื่อพัฒนาเป็นเครื่องสำอาง

ผู้แต่ง

  • วัชราภรณ์ ทาหาร คณะศึกษาศาสตร์ มหาวิทยาลัยราชภัฏเชียงราย
  • นภาพร วรรณาพรม คณะครุศาสตร์ มหาวิทยาลัยราชภัฏเชียงราย
  • เยาวลักษณ์ ขันหัวโทน คณะครุศาสตร์ มหาวิทยาลัยราชภัฏเชียงราย
  • ณรงค์ฤทธิ์ ติ๊บคําป้อ คณะครุศาสตร์ มหาวิทยาลัยราชภัฏเชียงราย

DOI:

https://doi.org/10.14456/lsej.2023.23

คำสำคัญ:

สารฟีนอลิกและฟลาโวนอยด์ , ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ , เอทโธโซม , เปลือกกล้วย , กล้วยหอมทอง

บทคัดย่อ

งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อวิเคราะห์ปริมาณสารฟีนอลิก ฟลาโวนอยด์ทั้งหมดและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดเปลือกกล้วยหอมทองและกล้วยไข่ และกักเก็บด้วยด้วยอนุภาคเอทโธโซม
เพื่อพัฒนาเป็นเวชสำอาง สารสกัดเปลือกกล้วยหอมทองและกล้วยไข่เมื่อสกัดด้วยวิธีซอกห์เลต
ด้วยตัวทำละลาย 70% เอทิลแอลกอฮอล์มีปริมาณฟีนอลิกฟลาโวนอยด์รวมทั้งหมดและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระที่ลดลงตามระยะดิบ ห่าม และสุก สารสกัดเปลือกกล้วยหอมทองดิบมีปริมาณสารฟีนอลิก (243.00±0.39 มิลลิกรัมสมมูลของกรดแกลลิคต่อ 1 กรัมน้ำหนักแห้ง) ฟลาโวนอยด์ทั้งหมด (920.31±0.00 มิลลิกรัมสมมูลของเควอซิทินต่อ 100 กรัมน้ำหนักแห้ง) และฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ (308.82±2.05 มิลลิกรัมสมมูลของโทรอกซ์ต่อ 1 กรัมน้ำหนักแห้ง) มากที่สุด รองลงมาคือสารสกัดเปลือกกล้วยไข่ดิบ (58.60±9.07 มิลลิกรัมสมมูลของกรดแกลลิคต่อ 1 กรัมน้ำหนักแห้ง, 545.31±0.00
มิลลิกรัม สมมูลของเควอซิทินต่อ 100 กรัมน้ำหนักแห้ง, 25.98±1.02 มิลลิกรัมสมมูลของโทรอกซ์ต่อ
1 กรัมน้ำหนักแห้ง) สารสกัดเปลือกกล้วยไข่สุกให้ปริมาณสารฟีนอลิก และฟลาโวนอยด์น้อยที่สุด เตรียม
เอทโธโซมสารสกัดเปลือกกล้วยหอมทองดิบ (0.25% w/w) โดยใช้เครื่องผสมโฮโมจิไนเซอร์ความเร็วสูง ให้ขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางของเอทโธโซม (Z-Average) เท่ากับ 179.4±3.60 นาโนเมตร ประจุบน
ผิวอนุภาคศักย์ซีต้า (Zeta-potential) -43.5±0.72 มิลลิโวลต์ ดัชนีการกระจายตัว (Polydispersity index, PDI) 0.256±0.02 ประสิทธิภาพการกักเก็บของเอทโธโซมสารสกัดเปลือกกล้วยหอมทองดิบ
มีค่าเท่ากับ 68.70±0.95%

เอกสารอ้างอิง

Aboul-Enein AM, Salama ZA, Gaafar AA, Aly HF, Abou-Elella F, Ahmed HA. Identification of phenolic compounds from banana peel (Musaparadaisica L.) as antioxidant and antimicrobial agents. Journal of Chemical and Pharmaceutical Research 2016;8(4):46-55.

Alex AS, Jyothi D, Priya S. Formulation and optimization of ethosomes loaded with spondias pinnata bark extract for topical delivery by using 23 factorial design. Plant Archives 2020;20(2):8009-8018.

Bhokare, SG, Dongaonkar, CC, Lahane, SV, Salunke, PB, Sawale, VS, Thombare, MS. Herbal novel drug deliver: A review. World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences 2016;5(8):593-611.

Charoenteeraboon, J, Ngawhirunpat, T, Chaidedgumjorn, A, Asavapichayont, P, Mahadlek, J, Tuntarawongsa, S. Total Phenolic content and antioxidant activities of different parts of hom thong banana extract and extraction related factors. Thai Bulletin of Pharmaceutical Sciences 2019;14(2):47-60.

Chauhan A, Nagar A, Bala K, Sharma Y. Comparative study of different parts of fruits of Musa Sp. on the basis of their antioxidant activity. The Pharma Letter 2016;8(15):88-100.

Elsayed MM, Abdallah OY, Naggar VF, Khalafallah NM. Deformable liposomes and ethosomes: Mechanism of enhanced skin delivery. International Journal of Pharmaceutics 2006;322(1-2):60-6.

Fatemeh SR, Saifullah R, Abbas FMA, Azhar ME. Total phenolics, flavonoids and antioxidant activity of banana pulp and peel flours: influence of variety and stage of ripeness. International Food Research Journal 2012;19(3):1041-1046.

González-Montelongo R, Lobo MG, González M. Antioxidant activity in banana peel extracts: testing extraction conditions and related bioactive compounds. Food Chemistry 2010;119:1030-1039.

Karuppiah P, Mustaffa M. Antibacterial and antioxidant activities of Musa sp. leaf extracts against multidrug resistant clinical pathogens causing nosocomial infection. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine 2013;3(9):737-742.

Liu J, Hu W, Chen H, Ni Q, Xu H, Yang X. Isotretinoin-loaded solid lipid nanoparticles with skin targeting for topical delivery. International Journal of Pharmaceutics 2007;328(2):191-195.

Nuengchamnong N, Krittasilp K, Ingkaninan K. Rapid Screening and identification of antioxidants in aqueous extracts of houttuynia cordata using LC–ESI–MS coupled with DPPH Assay. Food Chemistry 2009;117(4):50-756.

Park SN, Lee HJ, Kim HS, Park MA, Gu HA. Enhanced transdermal deposition and characterization of quercetin-loaded ethosomes. Korean Journal of Chemical Engineering 2013;30(3):688-692.

Singleton VL, Orthofer R, Lamuela-Raventós RM. Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of folin-ciocalteu reagent methods in enzymology. Methods in Enzymology 1999;299:152-178.

Srivastava N, Kaur CD, Fatima Z. Formulation and performance evaluation of berberis extract loaded ethosomal gel. Asian Journal of Pharmaceutics 2017;11(3):176-83.

Touitou E, Dayan N, Bergelson L, Godin B, Eliaz M. Ethosomes -novel vesicular carriers for enhanced delivery: characterization and skin penetration properties. Journal of Control Release 2000;65(3):403-18.

Upadhyay N, Mandal S, Bhatia L, Shailesh S, Chauhan P. A review on ethosomes: An emerging approach for drugdelivery through the skin. RRST-Pharmaceutics 2011;3(7):19-24.

ดาวน์โหลด

เผยแพร่แล้ว

2023-09-05

รูปแบบการอ้างอิง

ทาหาร ว. ., วรรณาพรม น. ., ขันหัวโทน เ. ., & ติ๊บคําป้อ ณ. . (2023). การเตรียมเอทโธโซมสารสกัดเปลือกกล้วยหอมทอง เพื่อพัฒนาเป็นเครื่องสำอาง. Life Sciences and Environment Journal, 24(2), 297–308. https://doi.org/10.14456/lsej.2023.23

ฉบับ

ประเภทบทความ

Research Articles