การเปรียบเทียบวิธี MODIFIED KNOTT’S CONCENTRATION และ CAPILLARY TUBE TECHNIQUE เพื่อใช้ในการวินิจฉัยเชื้อไมโครฟิลาเรีย จากแรงงานต่างด้าวที่เข้ารับการตรวจในโรงพยาบาลสวรรค์ประชารักษ์
คำสำคัญ:
ไมโครฟิลาเรีย, วิธีโมดิฟายน็อตคอนเซนเตรชั่น, วิธีคาปิลลารี่ทิวเทคนิคบทคัดย่อ
จำนวนผู้ใช้แรงงานจากประเทศเพื่อนบ้านในแต่ละปีเพิ่มสูงขึ้นและน่าจะทำให้เพิ่มอุบัติการณ์เกิดโรคของคนไทยสูงขึ้นด้วย โรคเท้าช้างเป็นปัญหาสาธารณสุขในประเทศไทย ซึ่งพบบ่อยว่าแพร่กระจายมาจากกลุ่มผู้ใช้แรงงานต่างด้าว โรคเท้าช้างที่พบในประเทศไทยมีสาเหตุมาจากเชื้อ Wuchereria bancrofti และ Brugia malayi หนอนพยาธิทั้งสองชนิดนี้มียุงเป็นพาหะนำโรคหนอนพยาธิตัวเต็มวัย เพศเมียจะออกลูกเป็นตัวอ่อนที่รู้จักกันว่าไมโครฟิลาเรีย เข้าไปในกระแสเลือดของโฮสต์ ผู้ติดเชื้อมักไม่แสดงอาการ จึงค้นหาผู้ติดเชื้อได้ยาก การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อเปรียบเทียบประสิทธิภาพของสองวิธีในการตรวจหาไมโครฟิลาเรีย (Microfilaria) ในเลือด วิธี modified Knott’s concentration และ capillary tube technique จากแรงงานต่างด้าวสัญชาติพม่า จำนวน 31,541 ตัวอย่าง ผลการศึกษาแสดงให้เห็นว่าไม่พบความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญระหว่างวิธี modified Knott’s concentration และวิธี capillary tube technique อัตราการพบไมโครฟิลาเรียเป็นร้อยละ 0.013 (4/31,541) จากการศึกษานี้วิธี capillary tube technique เป็นวิธีที่เหมาะสมในการตรวจวินิจฉัยและควบคุมโรคเท้าช้าง เนื่องจากใช้ตัวอย่างเลือดและเวลาในการตรวจน้อยกว่าเมื่อเปรียบเทียบกับวิธี modified Knott’s concentration
เอกสารอ้างอิง
BinoSundar ST, Ravindran R. Comparison of various methods for the detection of Microfilaria of Setaria in the blood of cattle. Tamilnadu Journal of Veterinary and Animal Sciences. 2010; 1: 45-48.
Bureau of Epidemiology, DDC, MOPH. National Disease Surveillance (Report 506) 2561. Source: https://www.boe.moph.go.th/boedb/surdata/506wk/y61/d76_4361.pdf. 24 November 2018.
Collins JD. The detection of microfilariae using the capillary haematocrit tube method. Tropical Animal Health Production. 1971; 3(1): 23-25.
Cringoli G, Rinaldi L, Veneziano V. et al. A prevalence survey and risk analysis of filariosis in dogs from the Mt. Vesuvius area of southern Italy. Veterinary Parasitology. 2001; 102(3): 243-252.
El-Moamly AA, El-Sweify MA, Hafez MA. Using the AD12-ICT rapid-format test to detect Ucher eria bancrofti circulating antigens in comparison to Og4C3 - ELISA and nucleopore membrane filtration and microscopy techniques. Parasitology Research. 2012; 11: 1379-1383.
Fink DL, Fahle GA, Fischer S. et al. Toward molecular parasitologic diag nosis: Enhanced diagnostic sensitivity for filarial infections in mobile populations, Journal of Clinical Microbiology. 2011; 49: 42-47.
Jaijakul S, Nuchprayoon S. Treatment of Lymphatic filariasis: An update. Chulalongkorn Medical Journal. 2005; 49(7): 401-421
Nithikathkul C, Wannapinyosheep S, Saichua P. et al. Filariasis: the disease will come to be the problem of Thailand. Songklanagarind Medical Journal. 2549; 24(1): 53-58.
Nuchprayoon S. Lymphatic filariasis: Basic knowledge to apply: Lymphatic filariasis research unit, Faculty of Medicine, Chulalongkorn Univesity. Bangkok: Vibulkij Printing; 2006.
Pankla R, Jeekeeree W, Khaoplab J. et al. Detection of microfilaria in Myanmar immi-grant workers by modified Knott’s concentration technique. Journal of Medical Technology and Physical Therapy. 2013; 25(1): 43-49.
Rawlins SC, Chailett P, Ragoonanansingh RN. et al. Microscopical and serological Diagnosis of Wuchereria bancrofti. West Indian Medical Journal. 1994; 43: 75-79.
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
Each article is copyrighted © by its author(s) and is published under license from the author(s).



