STAGES OF MICROSPORE DEVELOPMENT IN VARIOUS SIZES OF LILIUM LONGIFLORUM VAR. FORMOLONGO FLOWER BUDS

  • Samaporn Ruangsanka Valaya Alongkorn Rajabhat University
  • Nonthawat Homprae
  • Jirawat Ruangnet
Keywords: Microspores, Developmental stage, Lilium longiflorum var. formolongo

Abstract

The key problem of Easter lily (Lilium longiflorum var. formolongo) growing in the plots are non-homogenous growth which caused by abiotic factors and led to the effect of floral harvest. This research aimed to study the development stage of the microspores from L. longiflorum var. formolongo that related to the different sizes of flower buds and to determine the sizes of flower buds that contained the tetrad microspores, which further developed to new embryoid. The anthers of the flower buds with 1.00 - 2.10 cm length and the age of 70 - 75 days after planting bulbs were dyed with Acetocarmine 0.002 M concentration then detecting stage of meiosis cell division by using Squash technique. It was found the size of flower buds during 1.90 - 2.10 cm length which contained significantly highest microspores in tetrad stage amount 18.78% at p< 0.05 when compared with other sizes. It was the most appropriate development stage for further research of the pure line improvement from another culture.

Downloads

Download data is not yet available.

References

เจนจิรา มาหา จรีรัตน์ มงคลศิริวัฒนา อมรทิย์ เมืองพรหม และสุรินทร์ ปิยะโชคณากุล. (2560). ลักษณะเชิงโมเลกุลของยีนกำหนดรหัสโปรตีน APETALA2 ที่ตอบสนองต่อช่วงแสงในข้าว (Oryza sativa L.) ที่ไวและไม่ไวต่อช่วงแสง. วารสารวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี, 25(2), 287-301.

ลิลี.(2559). สืบค้นเมื่อ 17 กันยายน 2562, จากวิกิพีเดีย https://th.wikipedia.org/wiki/ลิลี

สมศักดิ์ อภิสิทธิวาณิช และสุมน มาสุธน. (2543). การศึกษาโครโมโซมพืชด้วยการย้อมเซลล์. วารสารวิทยาศาสตร์ สมาคมวิทยาศาสตร์แห่งประเทศไทย, 54(3), 178-180.

อรดี สหวัชรินทร์. (2542). เทคโนโลยีการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพืช. (พิมพ์ครั้งที่ 3). กรุงเทพฯ: มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์.

Arzate-Fernandez, A-M., Nakazaki, T., Yamaata, H. & Tanisaka, T. (1997). Production of double-haploid plants from Lilium longiforum Thumb. anther culture. Plant Science, 123(1-2), 179-187.

Guasmi, F., Elfalleh, W., Hannachi, H., Feres, K., Touil, L., Marzougui, N., Triki, T. & Ferchichi, A. (2013). Influence of Various Physical Parameters on Anther Culture of Barley. Journal of Plant Nutrition, 36(5), 836-847.

Han, D.-S. & Niimi, Y. (2005). Production of haploid and double haploid plants from anther-derived callus of Lilium formosanum. ISHS Acta Horticulturae, 673(2), 389-393.

Ibrahim, A. M., Kayat, F. B., Hussin, Z. E. S. M., Susanto, D. & Ariffulah, M. (2014). Determination of Suitable Microspore Stage and Callus Induction from Anthers of Kenaf (Hibiscus cannabinus L.). The Scientific World Journal, 2014(1), 1-5.

Lin, M.K., Belanger, H., Lee, Y. J., Varkonyi-Gasic, E., Taoka, K., Miura, E. Xoconostle-Cázares, B., Gendler, K., Jorgensen, R. A., Phinney, B., Lough, T. J. & Lucas, W. J. (2007). FLOWERING LOCUS T protein may act as the long-distance florigenic signal in the cucurbits, Plant Cell, 19(5), 1488-1506.

Schaeffer, G. W. (1989). Role of Microspores and Anther Culture in Advancing Technologies. Advances in Cell Culture, 7, 161-182.

Wang, A.-j., Tang, J.-f., Zhao, X.-y. & Zhu, L.-h. (2008). Isolation of LiLFY1 and its expression in lily (Lilium longiflorum Thunb.). Agricultural Sciences in China, 7(9), 1077-1083.

WCSP. (2019). World Checklist of Selected Plant Families. Retrieved September 6, 2019, from https://wcsp.science.kew.org/ Royal Botanic Garden Kew Science: Kew.org.

Published
2019-12-20
Section
บทความวิจัย