An assessment of wound healing of three different abdominal incision shapes in male African catfish, Clarias gariepinus (Burchell, 1822) Thawatchai Ngamsiri* and Suvanon Chamchan
Article Sidebar
Main Article Content
Abstract
The results of male African catfish Clarias gariepinus (Burchell, 1822), wound healing of
three different abdominal incision shapes (I-shape, T-shape, and U-shape) was studied during a four-week period. The wound healing of C. gariepinus have been reported the fastest in the I-shape incision, which takes around two weeks to heal fully. The expression behavior of C. gariepinus after surgery showed that fish swam swiftly and ate well 2 weeks after surgery. The survival rate was 100
percent.
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
ลิขสิทธิ์ต้นฉบับที่ได้รับการตีพิมพ์ในวารสารนวัตกรรมวิทยาศาสตร์เพื่อการพัฒนาอย่างยั่งยืนถือเป็นกรรมสิทธิ์ของคณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยสวนดุสิต ห้ามผู้ใดนำข้อความทั้งหมดหรือบางส่วนไปพิมพ์ซ้ำ เว้นแต่จะได้รับอนุญาตอย่างเป็นลายลักษณ์อักษรจากคณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยสวนดุสิต นอกจากนี้ เนื้อหาที่ปรากฎในบทความเป็นความรับผิดชอบของผู้เขียน ทั้งนี้ไม่รวมความผิดพลาดอันเกิดจากเทคนิคการพิมพ์
References
จินตรา ประภาสะโนบล. (2545). การวิจัยและพัฒนาประสิทธิภาพการใช้เอ็นตกปลาเย็บแผล. วิทยานิพนธ์ปริญญาโท. สถาบันราชภัฏเพชรบุรี, เพชรบุรี. 118 น.
ฎิลก วงศ์เสถียร. (2548). เนื้องอกอัณฑะในปลาคาร์พ (Cyprinus carpio) (รายงานสัตว์ป่วย). เชียงใหม่สัตวแพทย
สาร. 3: 55–63.
เมธา คชาภิชาติ วัฒนา ริ้วทอง พลชาติ ผิวเณร และยงยุทธ อุนากรสวัสดิ์. (2557). คุณภาพน้ำเชื้อจากพูอัณฑะปลากดแก้วที่สร้างขึ้นใหม่. เอกสารวิชาการ. สำนักวิจัยและพัฒนาประมงน้ำจืด. กรมประมง.
อุทัยรัตน์ ณ นคร. (2538). การเพาะขยายพันธุ์ปลา. สำนักพิมพ์วีบุ๊ค, กรุงเทพฯ. 231 น,
Azmat, C. E., and Council, M. (2022). Wound Closure Techniques. 2021 Nov 11. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): Stat Pearls Publishing; 2022 Jan–. PMID: 29262163.
Boone, S. S., Hernandez, S. M., Camus, A. C., Peterson, D. L., Jennings, C. A., Shelton, J. L., Divers, S. J., (2013). Evaluation of Four Suture Materials for Surgical Incision Closure in Siberian Sturgeon. Transactions of the American Fisheries Society, 142(3), 649–659.
Brummett, R. E., (2008). Clarias catfish: Biology, ecology, distribution and biodiversity, pp. 64–72. In: Ponzoni, R. W., and Nguyen, N. H., (Eds.), 2008. Proceedings of a Workshop on the Development of a Genetic Improvement Program for African catfish, Clarias gariepinus. World Fish Center Conference Proceedings Number 1889. The World Fish Center, Penang, Malaysia. 130 pp.
Chen, X., Lai, C., Wang, Y., Wei, L., and Zhong, Q. (2018). Disinfection effect of povidone-iodine in aquaculture water of swamp eel (Monopterus albus). PeerJ, 6, e5523. https://doi.org/ 10.7717/peerj.5523.
de Graaf, G., and Janssen, H. (1996). Artificial reproduction and pond rearing of African catfish, Clarias gariepinus in Sub-Saharan Africa - A handbook. FAO Fisheries Technical Paper. No. 362. FAO, Rome, Italy. 73pp.
Graaf De, G., Galemoni, F., and Banzoussi, B. (1995). The artificial reproduction and fingerling production of the African catfish Clarias gariepinus (Burchell, 1822) in protected and unprotected ponds. Aquaculture Research, 26, 233–242.
Haylor, G. S. (1993). Controlled hatchery production of African catfish, Clarias gariepinus (Burchell): an overview. Aquaculture Research, 24(2), 245–252.
Hu, Z., Yang, P., Zhou, C., Li, S., and Hong, P. (2017). Marine Collagen Peptides from the Skin of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus): Characterization and Wound Healing Evaluation. Marine drugs, 15(4), 102. https://doi.org/10.3390/md15040102.
Huisman, E. A., and Richter, C. J. J. (1987). Reproduction, growth, health control and aquacultural potential of the African catfish, Clarias gariepinus (Burchell, 1822). Aquaculture, 63(1–4), 1–14.
Kudur, M. H., Pai, S. B., Sripathi, H., and Prabhu. S. (2009). Sutures and suturing techniques in skin closure. Indian Journal of Dermatology, Venereology and Leprology, 75(4), 425-434.
Massee, K. C., Rust, M. B., Hardy, R. W., and Stickney, R. R. (1995). The effectiveness of tricaine, quinaldine sulfate and metomidate as anaesthetics for larval fish. Aquaculture, 134, 351–359.
Mellas, E. J., and Haynes, J. M. (1985). Swimming performance and behavior of rainbow trout (Salmo gairdneri) and white perch (Morone americana): effects of attaching telemetry transmitters. Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 42, 488–493.
Mohamadi Yalsuyi, A., Forouhar Vajargah, M., Hajimoradloo, A., Mohammadi Galangash, M., Prokić, M. D., and Faggio, C. (2021). Can Betadine (10% povidone-iodine solution) act on the survival rate and gill tissue structure of Oranda goldfish (Carassius auratus)?. Veterinary Research Communications. https://doi.org/10.1007/s11259-021-09862-8.
Ostrander, G.K. (Ed.), 2000. The Laboratory fish, Handbook of experimental animals. Academic, San Diego, Calif. 678 p.
Palic, D., Herolt, D. M., Andreason, C. B., Menzel, B. W., and Roth, J. W. (2006). Anaesthetic efficacy of tricaine methanesulfonate, metomidate and eugenol: Effects on plasma cortisol concentration and neutrophil function in fathead minnows, Pimephales promelas. Aquaculture, 254, 675–685.
Saint-Erne, N., (2002). Advanced koi care: For veterinarians and professional koi keepers, First edition. In: Saint-Erne, N. editor. Erne Enterprises.
Vitule, J. R. S., Umbria, S. C., and Aranha, J. M. R. (2006). Introduction of the African Catfish Clarias gariepinus (Burchell, 1822) into Southern Brazil. Biological Invasions, 8, 677. https://doi.org/10.1007/s10530-005-2535-8.
Wagner, G. N., and Stevens, E. D. (2000). Effects of different surgical techniques: Suture material and location of incision site on the behaviour of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Marine and Freshwater Behaviour and Physiology, 33(2), 103–114.
Wagner, G. N., Stevens, E. D., and Byrne, P. (2000). Effects of suture type and patterns on surgical wound healing in rainbow trout. Transactions of the American Fisheries Society, 129(5), 1196–1205.
Zweerde, V. D. (1990). Biological control of aquatic weeds by means of phytophagous fish. In: Pieterse, A. H., Murphy, K. J., editors. Aquatic Weeds: The Ecology and Management of Nuisance Aquatic Vegetation. Oxford: Oxford University Press; pp. 201–221.