สภาวะที่เหมาะสมของการหมักไมซีเลียมเห็ดหลินจือในน้ำลำไย
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
ลำไยเป็นผลผลิตทางการเกษตรของภาคเหนือประเทศไทยที่มีผลผลิตมาก ราคาตกต่ำ และขาดนวัตกรรมเพื่อเพิ่มมูลค่า ในสถานการณ์โควิด 19 มีความต้องการอาหารเพื่อกระตุ้นภูมิคุ้มกัน ดังนั้นงานวิจัยนี้จึงนำลำไยมาเป็นแหล่งพลังงานของราเห็ดหลินจือใช้ในการเจริญเติบโตและผลิตเส้นใยโดยกระบวนการหมักในอาหารเหลว งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อหาสภาวะที่เหมาะสมในการหมักไมซีเลียมเห็ดหลินจือในน้ำลำไย ปัจจัยในการศึกษาประกอบด้วยปริมาณของน้ำลำไย 9 องศาบริกซ์, น้ำตาลทราย, หางนม, CaCO3, KH2PO4, MgSO4.7H2O และกล้าเชื้อ การคัดเลือกตัวแปรโดยวิธี Plackett Burman Design การหาช่วงที่เหมาะสมโดยวิธี Steepest Ascent และการหาสภาวะที่เหมาะสมโดยวิธีพื้นผิวตอบสนองนำมาใช้ในการวิเคราะห์ทางสถิติ การทดลองพบว่า น้ำลำไย 9 องศาบริกซ์ (251.549 มิลลิลิตรต่อลิตร) และหางนม (14.226 กรัมต่อลิตร) เป็นปัจจัยที่สำคัญและผลิตไมซีเลียมหลินจือน้ำหนักแห้งสูงสุด 36.636 กรัมต่อลิตร ในขณะที่องค์ประกอบอื่นๆของอาหารที่หมักในอาหารเหลวมีดังนี้ ปริมาณน้ำตาล 7.5 กรัมต่อลิตร CaCO3 0.6 กรัมต่อลิตร KH2PO4 0.75 กรัมต่อลิตร MgSO4.7H2O 0.75 กรัมต่อลิตร กล้าเชื้อ 50 มิลลิลิตรต่อลิตร งานวิจัยนี้สามารถนำไปประยุกต์ในเครื่องดื่มเพื่อสุขภาพ อาหารเสริม และผลิตภัณฑ์เสริมภูมิคุ้มกันจากธรรมชาติ
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
บทความที่ลงตีพิมพ์เป็นข้อคิดเห็นของผู้เขียนเท่านั้น
ผู้เขียนจะต้องเป็นผู้รับผิดชอบต่อผลทางกฎหมายใดๆ ที่อาจเกิดขึ้นจากบทความนั้น
References
T. Gan, C. Feng, H. Lan, R. Yang, J. Zhang, C. Li, and W. Li, “Comparison of the structure and immunomodulatory activity of polysaccharides from fresh and dried longan,” Journal of Functional Foods, vol. 76, Art. no. 104323, 2021.
C. Somjai, T. Siriwoharn, K. Kulprachakarn, S. Chaipoot, R. Phongphisutthinant, W. Chaiyana, S. Srinuanpan, and P. Wiriyacharee, “Effect of drying process and long-term storage on characterization of Longan pulps and their biological aspects: Antioxidant and cholinesterase inhibition activities,” LWTFood Science and Technology, vol. 154, Art. no. 112692, 2022.
Y. H. Tseng, J. H. Yang, and J. L. Mau, “Antioxidant properties of polysaccharides from Ganoderma tsugae,” Food Chemistry, vol. 107, no. 2, pp. 732–738, 2008.
X. B. Mao, T. Eksriwong, S. Chauvatcharin and, J. J. Zhong, “Optimization of carbon source and carbon/nitrogen ratio for cordycepin production by submerged cultivation of medicinal mushroom Cordyceps militaris,” Process Biochemistry, vol. 40, no. 5, pp. 1667– 1672, 2005.
K. I. Lin, Y. Y. Kao, H. K. Kuo, W. B. Yang, A. Chou, H. H. Lin, A. L. Yu, and C. H. Wong, “Reishi polysaccharides induce immunoglobulin production through the TLR4/TLR2-mediated induction of transcription factor blimp-1,” Journal of Biological Chemistry, vol. 281, no. 34, pp. 24111–24123, 2006.
K. Arunachalam, S. P. Sasidharan, and X. Yang, “A concise review of mushrooms antiviral and immunomodulatory properties that may combat against COVID-19,” Food Chemistry Advances, vol. 1, Art. no. 100023, 2022.
J. P. Balamurugan, S. Supramani, S. R. A. Usuldin, Z. Ilham, A. Klaus, N. K. K. Ikram, R. Ahmad, and W. A. A. Q. I. Wan-Mohtar, “Efficient biomass-endopolysaccharide production from an identified wild-Serbian Ganoderma applanatum strain BGS6Ap mycelium in a controlled submerged fermentation,” Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, vol. 37, Art. no. 102166, 2021.
N. A. Hassan, S. Supramani, M. N. A. Sohedein, S. R. A. Usuldin, A. Klaus, Z. Ilham, W. H. Chen, and W. A. A. Q. I. Wan-Mohtar, “Efficient biomass-exopolysaccharide production from an identified wild-Serbian Ganoderma lucidum strain BGF4A1 mycelium in a controlled submerged fermentation,” Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, vol. 21, Art. no. 101305, 2019.
S. Jinendiran, D. Kumar, H. U. Dahms, C. D. Arulanandam, and N. Sivakumar, “Optimization of submerged fermentation process for improved production of β-carotene by Exiguobacterium acetylicum S01,” Heliyon, vol. 5, no. 5, Art. no. e01730, 2019.
N. Narkprasom, J. H. Guo, T. C. Huang, and Y. K. Guu, “Combination of statistical techniques for submerged fermentation for extracellular polysaccharide and biomass of Ganoderma tsugae,” American Journal of Biostatistics, vol. 3, no. 2, pp. 38–46, 2013.
T. Luo, L. Shua, T. Lai, L. Liao, J. Li, Z. Duan, X. Xue, D. Han, and Z. Wu, “Up-regulated glycolysis, TCA, fermentation and energy metabolism promoted the sugar receding in ‘Shixia’ longan (Dimocarpus longan Lour.) pulp,” Scientia Horticulturae, vol. 281, Art. no. 109998, 2021.
X. F. Zhang, S. Guo, C. T. Ho, and N. S. Bai, “Phytochemical constituents and biological activities of longan (Dimocarpus longan Lour.) fruit: A review,” Food Science and Human Wellness, vol. 9, no. 2, pp. 95–102, 2020.
M. Y. Chang, G. J. Tsai, and J. Y. Houng, “Optimization of the medium composition for the submerged culture of Ganoderma lucidum by Taguchi array design and steepest ascent method,” Enzyme and Microbial Technology, vol. 38, no. 3–4, pp. 407–414, 2006.
M. l. Cui, H. Y. Yang and G. Q. He, “Submerged fermentation production and characterization of intracellular triterpenoids from Ganoderma lucidum using HPLC-ESI-MS,” Journal of Zhejiang University-SCIENCE B (Biomedicine & Biotechnology), no. 16, pp. 998–1010, 2015.
Y. J. Tang, . W. Zhang, R. S. Liu, L. W. Zhu, and J. J. Zhong, “Scale-up study on the fed-batch fermentation of Ganoderma lucidum for the hyperproduction of ganoderic acid and Ganoderma polysaccharides,” Process Biochemistry, vol. 46, no. 1, pp. 404–408, 2011.
J. Zhang, J. J. Zhong, and A. Geng, “Improvement of ganoderic acid production by fermentation of Ganoderma lucidum with cellulase as an elicitor,” Process Biochemistry, vol. 49, no. 10, pp. 1580–1586, 2014.