การเจริญเติบโต ประสิทธิภาพการย่อยได้ของคาร์โบไฮเดรต และโปรตีนในอาหารเสริมกระเจี๊ยบเขียวของปลากาดำ
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษาในครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาประสิทธิภาพในการย่อยคาร์โบไฮเดรต และโปรตีนในวัตถุดิบ และอาหารปลากาดำ และระดับที่เหมาะสมในการเสริมกระเจี๊ยบเขียวในอาหารปลากาดำ โดยทำการศึกษาในปลากาดำนํ้าหนักเฉลี่ยเริ่มต้นเท่ากับ 3.11±0.61 กรัม/ตัว และความยาวเริ่มต้นเฉลี่ยเท่ากับ 7.05±0.60 เซนติเมตร/ตัว วางแผนการทดลองแบบสุ่มสมบูรณ์ โดยแบ่งกลุ่มทดลองเป็น 4 กลุ่ม กลุ่มทดลองละ 3 ซํ้า ได้แก่ ปลาที่ได้รับอาหารเสริมกระเจี๊ยบเขียวที่ระดับ 0 2 4 และ 6 % ตามลำดับ โดยมีระดับโปรตีนในอาหารเท่ากับ 36.70 % ทำการทดลองเป็นระยะเวลา 16 สัปดาห์ จากการทดลองพบว่าประสิทธิภาพการย่อยคาร์โบไฮเดรตในแป้งสาลี และกระเจี๊ยบเขียว มีค่าสูงที่สุดโดยมีค่าเท่ากับ 62.48 และ 48.67 μmol maltose/g feed/amylase activity (P < 0.05) ประสิทธิภาพการย่อยโปรตีนมีค่าสูงในปลาป่น โดยมีค่าเท่ากับ 50.74±2.47 μmol DL-alanine equivalent/g feed/trypsin activity (P < 0.05) สำหรับประสิทธิภาพการย่อยคาร์โบไฮเดรตในอาหารมีค่าสูงในอาหารเสริม กระเจี๊ยบเขียวที่ระดับ 0 % (P < 0.05) และประสิทธิภาพการย่อยได้ของโปรตีนมีค่าสูงในอาหารเสริมกระเจี๊ยบเขียวที่ระดับ 2 - 6 % อัตราการเจริญเติบโตของปลากาดำที่ได้รับอาหารเสริมกระเจี๊ยบเขียวที่ระดับ 2 % มีค่าสูงที่สุดทั้งนํ้าหนักที่เพิ่มขึ้น การเจริญเติบโตจำเพาะและประสิทธิภาพการใช้โปรตีน (P < 0.05) สำหรับอัตราการรอดตาย และอัตราการเปลี่ยนอาหารเป็นเนื้อมีค่าไม่ต่างกันทางสถิติระหว่างกลุ่มทดลอง (P > 0.05)
Article Details
References
Uk-katawewat, S. and Pongchawee, K. (2543). Taxonomy of Ornamental Fish for Thailand Exports. Bangkok: Fisheries Department
Vidthayanon, C. (2547). Handbook of Freshwater Fishes. Bangkok: Bangkoksarakadee Press
Ingram, B. A. and Lasasimma, O. (2008). Production of Cirrhinusmolitorella and Labeo chrysophekadionfor Culture Based Fisheries Development in Lao PDR. Part 1. Captive Spawning. Aquaculture Asia. Vol. 13, No. 2, pp. 24-31
Chitmanat, C. (2551). Fish Disease Handbook. Chiangmai: Maejo University Press
Shengjie, L., Renhui, H., Nagendra, P., Shah, X. T., Yonghua, X., and Hua, W. (2014). Antioxidant and antibacterial activities of exopolysaccharides from Bifidobacterium bifidum WBIN03 and Lactobacillus plantarum R315. Journal of Dairy Science. Vol. 97, Issue 12, pp. 7334-7343. DOI: 10.3168/jds.2014-7912
Kumar, D. S., Tony, D. E., Kumar, A. P., Kumar, K. A., Rao, D. B. S., and Nadendla, R. (2013). A REVIEW ON: Abelmoschus esculentus (OKRA). International Research Journal of Pharmaceutical and AppliedSciences (IRJPAS). Vol. 3, No. 4, pp. 129-132
Mizuno, T., Wang, G., Zhang, J., Kawagishi, H., Nishitoba, T., and Li, J. (1995). Ganoderma lucidum and Ganodermatsugae: Bioactive Substances and Medical Effects. Food Reviews International. Vol. 11, Issue 1, pp. 151-166. DOI: 10.1080/87559129509541025
Shyang, C. S. and Mei, H. L. (2012). Composition Analysis and Immuno-Modulatory Effect of Okra (Abelmoschus esculentus L.) Extract. Food Chemistry. Vol. 134, No. 4, pp.1906-1911. DOI : 10.1016/j.foodchem.2012.03.110
Areekijseree, M., Engkagul, A., Kovitvadhi, U., Thongpan, A., Mingmuang, M., Pakkong, P. and Torrissen, K. R. (2004). Temperature and pH Characteristics of Amylase and Proteinase of Adult Freshwater Pearl Mussel, Hyriopsis (Hyriopsis) bialatus Simpson 1900. Aquaculture. Vol. 234, No. 1-4, pp. 575-587
Rungruangsak, T. K., Moss, R., Andresen, L. H., Berg, A., and Waagbø, R. (2006). Different Expressions of Trypsin and Chymotrypsin in Relation to Growth in Atlantic Salmon (Salmo Salar L.). Fish Physiol Biochem. Vol. 32, No. 1, pp. 7-23. DOI: 10.1007/s10695-005-0630-5
Roghieh, S., Seyed, H., Hoseinifar, H. V. D., and Maryam, D. (2017). The Effects of Dietary Myrtle (Myrtus communis) on Skin Mucus Immune Parameters and mRNA Levels of Growth, Antioxidant and Immune Related Genes in Zebrafish (Danio rerio). Fish Shellfish Immunol. Vol. 66, pp. 264-269. DOI: 10.1016/j.fsi.2017.05.007
Rainboth, W. J. (1996). The Taxonomy, Systematics, and Zoogeography of Hypsibarbus, a New Genus of Large Barbs (Pisces, Cyprinidae) from the Rrivers of Southeastern Asia. Zoology. Vol. 129, No. 1-13, pp. 1-199
Chuapoehuk, W. (2543). Aquatic Animal Nutrition and Feeding. 2nd ed. Bangkok: Kasetsart University Press
De Silva, S. S. and Anderson, T. A. (1994). Fish Nutrition in Aquaculture. London: Chapman & Hall
Halver, J. E. and Hardy, R. W. (2002). Fish Nutrition. 3rd ed. New York: Academic Press
Kumar, A., Baranwal, D. K., Aparna, J., and Srivastav, K. (2013). Combining Ability and Heterosis for Yield and its Contributing Characters in Okra (Abelmoschus esculantus (L.) Moench). Madras Agricultural Journal. Vol. 100, No. 1-3, pp. 30-35
Siriphat, D. (1998). Red/Green Okra Taste and Value. Access (7 October 2017). Available (https://www.doctor.or.th/article/detail/2421)
Pamornprawat, S. (2008). Okra. Access (7 October 2017). Available (https://www.doctor.or.th/article/detail/1186)
Thammarutwasik, P., Hongpattarakere, T., Chantachum, S., Kijroongrojana, K., Itharat, A., Reanmongkol, W., Tewtrakul, S., and Ooraikul, B. (2009). Prebiotics - A Review. Songklanakarin Journal of Science and Technology. Vol. 31, No. 4, pp. 401-408
Wichienchot, S., Hongpattarakere, P., Jongjareonrak, A., Chansuwan, W., Hmadhlu, P., Hongpattarakere, T., Itharat, A., and Ooraikul, B. (2011). Extraction and Analysis of Prebiotics from Selected Plants from Southern Thailand. Songklanakarin Journal of Science and Technology (SJST). Vol. 33, No. 5, pp. 517-523
Bawa, S. N. and Badrie, N. (2016). Nutrient Profile, Bioactive Components, and Functional Properties of Okra (Abelmoschus esculentus (L.) Moench). Fruits, Vegetables, and Herbs. In: (Watson, R, and Preedy, V.). Bioactive Foods in Health Promotion. (1st ed). pp. 365-409. London: Academic Press