Antioxidant activity of chitooligosaccharides produced by chitinase from Leucaena leucocephala de wit
Keywords:
Chitinase, Chitooligosaccharides, Antioxidant Activity, Leucaena leucocephala de witAbstract
This research was to study antioxidant activity of chitooligosaccharides produced by chitinase from Leucaena leucocephala de wit. Chitinase was extracted from 2 week old germinated of Leucaena leucocephala de wit with 0.1 M sodium acetate buffer pH 4.5. It had activity of 2.701 unit/mL, protein of 1.050 mg/mL, and specific activity of 2.572 unit/mg. The pH and temperature optimum for the catalyst were 4.5 and 45°C, respectively. Chitooligosaccharides was cured for 30 min, 1 h, 2 h, and 4 h that showed the different at intervals. The large molecules of chitooligosaccharides ((GlcNAc)4, (GlcNAc)5, (GlcNAc)6) were deceased while the small molecules ((GlcNAc)1, (GlcNAc)2 and (GlcNAc)3) were increased. Chitooligosaccharides were incubated for 30 min had the highest antioxidant activity and better than the standard butylated hydroxytoluene (BHT) with EC50 of 1.21 0.1 µg/mL.
Downloads
References
พูนศุข ศรีโยธา,John Peberdy. (2539) เอนไซม์สลายไคตินและคุณสมบัติในการเร่งปฏิกิริยา. มหาวิทยา ลัยเทคโนโลยีสุรนารี:นครราชสีมา.
มานะ ขาวเมฆ. (2563). ฤทธิ์การยับยั้งเชื้อราของไคโตโอลิโกแซคคาไรด์จากต้นอ่อนก้ามปู กระถินบ้าน ข้าว กข. 6 และข้าวฟ่าง เคยู 630 ที่ผลิตด้วยเอนไซม์ไคติเนส. วารสารวิจัยและพัฒนาวไลยอลงกรณ์ ในพระบรมราชูปถัมภ์ สาขาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี, 15 (2), 119-130.
มานะ ขาวเมฆ. (2562). การต้านอนุมูลอิสระของไคโตโอลิโกแซคคาไรด์ที่ผลิตด้วยไคโตซาเนสจากก้ามปู กระถินบ้าน กระถินบ้าน และข้าวฟ่าง เคยู 630. วารสารวิจัยและพัฒนา วไลยอลงกรณ์ ในพระบรมราชูปถัมภ์ สาขาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี, 14 (3), 62-71.
ราตรี พระนคร. (2559). ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดใบกฤษณา (Aqilaria sinensis). วารสารพืชศาสตร์สงขลานครินทร์, 3, 21-24.
Berger, L. R., & Reynold, D. M. (1958). The Chitinase System of a Strain of Griseus. Biochimica et Biophysica Acta, 29 (3), 522–534.
Brand, W. W., Cuvelier, M. E., & Berset, C. (1995). Use of a Free Radical Method to Evaluate Antioxidant Activity. Lebensm.-Wiss. u.-Technol, 28 (1), 25-30.
Chernin, L. S., Fuente, L. D., Sobolev, L. V., Haran, S., Vorgias, C. E., Oppenheim, A. B. & Chet, I. (1997). Molecular Cloning, Structural Analysis, and Expression in Escherichia coli of a Chitinase Gene from Enterobacter agglomerans. Applied and Environmental Microbiology, 63 (3), 834–839.
Kidibulea, P. E., Santos-Morianob, P., & Ploub, F.J. (2020). Endo-chitinase Chit33 Specificity on Different Chitinolytic Materials Allows the Production of Unexplored Chitooligosaccharides with Antioxidant Activity. Biotechnology Reports, 27, 1-9.
Moon, C., Seo, D., Song, Y., Hong, S., Choi, S., & Jung, W. (2017). Antifugal Activity and Patterns of N-acetyl-chitooligosaccharide Degradation via Chitinase Produced from Serratia marcescens PRNK-1. Microbial Pathogenesis, 113, 218-224.
Park, J. E., Park, C. J., Sakchaisri, K., Karpova, T., Asano, S., McNally, J., Sunwoo, Y., Leem, S.H., & Lee, K. S. (2004). Novel Functional Dissection of the Localization-Specific roles of Budding Yeast Polo Kinase Cdc5p. Journal of Molecular Cell Biology, 24 (22), 73-86.
Santhi, P., Maneerote, J., & Pramvadee, T. (2016). A Study of the Antioxidant Activities and Polyphenol Oxidase inhibitory effects of Several Commercial Mushroom Trimming Extracts and its Application on Inhibiting Melanosis in White Shrimp (Litopenaeus vannamei). Naresuan University Journal: Science and Technology, 24 (2), 207-217.
Senol, M., Nadaroglu, H., Dikbas, N., & Kotan, R. (2014.) Purification of Chitinase Enzymes from Bacillus subtilis Bacteria TV-125, Investigation of Kinetic Properties and Antifungal Activity against Fusarium culmorum. Analytical of Clinical Microbiology and Antimicrobials, 13 (1), 3-41.
Tripathi, P., & Dubey, N. K. (2004). Evaluation of some Essential Oils as Botanical Fungitixicants in Management of Post-harvest Rotting of Citrus Fruits World. Journal of Microbiology and Biotechnology, 20, 317-321.
Yin, C., Kikuchi, K., Hochgreb, T., Poss, K. D., & Stainier, D. Y. (2010). Hand 2 Regulates Extracellular Matrix Remodeling Essential for Gut-Looping Morphogenesis in Zebrafish. Journal of Signal Transduction, 18 (6), 973-984.
Yong, H, K., Seur, K. P., Jin, Y. H., & Young, C. K. (2017). Purification and Characterization of a Major Extracellular Chitinase from a Biocontrol Bacterium, Paenibacillus elgii HOA73. The Plant Pathology Journal, 33 (3), 318-328.
